薰衣草色链霉菌SHMCCD59557-聚集二叠纪杆菌Permianibacteraggregans-扣囊拟内孢霉

微球菌核酸酶本身是一种能够降解核酸的酶，具有高效、特异性强的特点。

2× DNA/RNA变性PAGE胶上样缓冲液是一种2倍浓缩的核酸电泳上样缓冲液，专门用于变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）。它通过变性处理，确保核酸在电泳过程中以单链形式迁移，从而实现更清晰的分离效果。 主要成分 该缓冲液的主要成分包括： 甲酰胺：用于变性核酸，确保核酸以单链形式迁移。 SDS：一种阴离子表面活性剂，有助于核酸的变性。 溴酚蓝和二甲苯青：作为电泳指示剂，便于观察电泳进程。 EDTA：螯合金属离子，防止核酸降解。 使用方法 样品准备：将核酸样品与2×变性PAGE胶上样缓冲液按1:1比例混合，使最终浓度为1×。 变性处理：将混合后的样品在95℃加热5分钟，然后迅速冷却至冰上。 上样：将处理后的样品加入聚丙烯酰胺凝胶的加样孔中。 电泳：在适当的电压下进行电泳，直至指示剂迁移至凝胶的合适位置。 优势 高效变性：确保核酸在电泳过程中以单链形式迁移，提高分离效果。 清晰指示：溴酚蓝和二甲苯青作为指示剂，便于实时观察电泳进程。 高纯度：无RNase污染，确保RNA样品的完整性。

二甲苯青迁移速度较慢，适用于较大片段的示踪；溴酚蓝迁移速度较快，适用于较小片段的示踪。

磁珠法mRNA纯化试剂盒是一种基于磁珠分离技术的高效工具，广泛应用于从总RNA中快速纯化mRNA。该试剂盒利用磁珠表面的Oligo(dT)序列与mRNA的poly(A)尾特异性结合，通过磁场分离和洗涤步骤，最终获得高纯度的mRNA。 工作原理 磁珠法mRNA纯化试剂盒的核心是磁珠表面修饰的Oligo(dT)序列。这些序列能够特异性结合mRNA的poly(A)尾，通过磁力作用实现快速分离。具体步骤包括： 磁珠结合：将总RNA与Oligo(dT)磁珠混合，使磁珠上的Oligo(dT)与mRNA的poly(A)尾结合。 磁力分离：通过磁力架将磁珠与溶液分离，去除未结合的杂质。 洗涤：用洗涤缓冲液去除残留杂质。 洗脱：用洗脱液将mRNA从磁珠上洗脱下来。 优势 高纯度：纯化后的mRNA纯度高，适合多种下游实验，如RT-qPCR、高通量测序等。 快速高效：整个纯化过程通常在15分钟内完成。 操作简便：所有操作均在同一个离心管中完成，无需复杂设备。 适用范围广：适用于动物、植物、细菌等多种生物样本。 注意事项 磁珠保存：磁珠应避免冷冻或干燥，使用前需恢复至室温并充分混匀。

将核酸样品与3×甲酰胺凝胶上样缓冲液按体积比2:1混合，例如，5 μL核酸样品加入2.5 μL缓冲液

在分子生物学研究中，RNA的修饰和功能分析是理解基因表达调控的关键环节之一。Poly(A)聚合酶加尾试剂盒（Poly(A) Polymerase Tailing Kit）作为一种高效、便捷的实验工具，为科学家们提供了研究RNA功能和调控的有力支持。 Poly(A)聚合酶加尾试剂盒的核心是Poly(A)聚合酶，这种酶能够特异性地在RNA分子的3'末端添加多聚腺苷酸（Poly(A)）尾巴。Poly(A)尾巴在RNA的稳定性和翻译效率中起着重要作用，例如，它能够保护RNA免受核酸酶的降解，增强RNA与核糖体的结合能力，从而提高蛋白质的合成效率。 试剂盒的优势 Poly(A)聚合酶加尾试剂盒通过优化反应条件，确保了Poly(A)加尾的高效率和特异性。试剂盒中包含了所有必要的酶、缓冲液和底物，用户只需按照说明书进行简单的操作步骤，即可完成RNA的加尾反应。这种高效性和便捷性使得Poly(A)聚合酶加尾试剂盒在实验室中得到了广泛应用。

此外，该试剂盒还支持多片段克隆，能够在一次反应中将多个片段同时插入到载体中。

在生物化学和分子生物学研究中，碱性磷酸酶（Alkaline Phosphatase，AP）是一种极为重要的工具酶，广泛应用于DNA和RNA的去磷酸化处理，以及蛋白质的修饰研究。它以其高效、特异性强的特点，成为实验室中不可或缺的“去磷酸化专家”。 碱性磷酸酶的功能 碱性磷酸酶是一种能够催化多种磷酸酯水解的酶，其主要功能是去除核酸和蛋白质末端的磷酸基团。在DNA和RNA的处理中，碱性磷酸酶常用于去除5'末端的磷酸基团，从而防止DNA或RNA片段的自身连接或与载体的非特异性连接。这种处理对于构建重组DNA分子、制备线性DNA模板以及研究核酸的末端结构等实验至关重要。 广泛的应用 碱性磷酸酶在分子生物学研究中具有广泛的应用。例如，在DNA克隆实验中，它被用于去除DNA片段的5'磷酸基团，防止片段的自身环化，从而提高克隆效率。在RNA研究中，碱性磷酸酶可以用于去除RNA末端的磷酸基团，帮助研究RNA的加工和修饰过程。此外，碱性磷酸酶还被用于蛋白质的去磷酸化研究，帮助科学家了解蛋白质的修饰状态和功能调控。

虽然连接效率较低，但T4 DNA连接酶也可以用于平末端DNA片段的连接。

DNA Marker VII是一种即用型的DNA分子量标准，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳中，用于估算DNA片段的大小。它由6条线性双链DNA条带组成，条带大小分别为300 bp、500 bp、1000 bp、1500 bp、2000 bp和2500 bp。其中，1500 bp条带的浓度较高（约100 ng/5 µL），显示为加亮带，便于在电泳后快速定位。产品特性即用型设计：已预混1×Loading Buffer，可直接取2-5 µL进行电泳，使用方便。清晰的电泳条带：条带大小准确，带型清晰，稳定性好。适用范围：适用于1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶电泳。使用方法上样量：根据加样孔的宽度，取2-5 µL加入琼脂糖凝胶的加样孔中。每1 mm × 1 mm的加样孔上样1 µL；如果加样孔较宽，可适当增加上样量。电泳条件： 凝胶浓度：建议使用1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶。电泳电压：4-10 V/cm，电泳时间20-30分钟。染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。

Probe qPCR Mix 可用于定量分析基因表达水平，帮助研究人员研究基因在不同生理条件下的变化

2×TBE-Urea 上样缓冲液是一种专门用于变性核酸电泳的试剂，能够有效解除核酸的二级结构，使其保持单链构型，从而实现更清晰的电泳分离效果。组成成分该缓冲液的主要成分包括：尿素（Urea）：用于解除核酸的二级结构，保持核酸的单链状态。 溴酚蓝（Bromophenol Blue） 和 二甲苯青（Xylene Cyanol FF）：作为示踪染料用于观察电泳的进程。Tris、硼酸和 EDTA：维持电泳过程中的缓冲体系，确保电泳条件的稳定。聚蔗糖（Ficoll）：增加样品密度，帮助样品沉入凝胶孔中。使用方法样品处理：将 2×TBE-Urea 上样缓冲液与待测核酸样品按 1:1 比例混合70℃加热 3-5 分钟，使核酸充分变性，之后立即置于冰上冷却。上样与电泳：将处理后的样品加入变性聚丙烯酰胺凝胶的加样孔中，进行电泳。应用场景2×TBE-Urea 上样缓冲液主要用于单链 DNA（ssDNA）和 RNA 的变性凝胶电泳，广泛应用于基因分型检测（如 SSR 标记、AFLP、RFLP 等）。它不适用于非变性凝胶电泳或蛋白电泳。

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